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细胞上清/尿液外泌体纯化试剂盒(SEC)

货号 YW036 售价(元) 1800
规格 0.5 mL CAS号
  • 产品简介
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货号

名称

规格

存储

YW036

细胞上清/尿液外泌体纯化试剂盒(SEC)

0.5 mL

4℃

YW037

细胞上清/尿液外泌体纯化试剂盒(SEC)

1 mL

4℃

YW037-L

细胞上清/尿液外泌体纯化试剂盒(SEC)

1 mL×4

4℃

产品简介

细胞上清/尿液外泌体纯化试剂盒(SEC)能够快速高效地从细胞上清、尿液等样本中提取纯化外泌体,该试剂盒基于尺寸排阻色谱法原理,根据颗粒大小分离纯化外泌体。本试剂盒提取后的外泌体可用于外泌体表征、外泌体功能验证、外泌体药物递送和外泌体标志物发现等研究。

产品组分及储存条件

名称

YW037

YW037-L

SEC纯化柱1mL)

1 mL×1

1 mL×4

保存液5×)

30 mL

120 mL

清洗液5×)

20 mL

80 mL

储存条件:4 ℃     有效期1年

操作流程:

样本预处理

1. 细胞上清

① 收集细胞上清10-50 mL(收集时细胞培养密度不低于1×10⁶cfu/mL);

② 细胞上清离心(3000 g、10 min),保留上清;

③ 上清液使用0.22 μm滤膜过滤;

④ 过滤后用100 kD超滤管进行浓缩,浓缩体积比为1:20,收集浓缩液备用。 

2. 尿液

① 采集中段晨尿约10-50 mL,离心(3000 g、10 min),保留上清;

② 上清液使用0.22 μm滤膜过滤;

③ 过滤后用100 kD超滤管浓缩,浓缩体积比为1:20;收集浓缩液备用。

外泌体分离

1. 试剂准备

保存液(5×)和清洗液(5×)均需要用去离子水稀释到1×,所用试剂需用0.22 μm滤膜过滤后再使用;

自备1×PBS,使用0.22 μm滤膜过滤后再使用或者采购已过膜的PBS(使用前需平衡到室温)。

2. 柱平衡

① 从冰箱取出SEC纯化柱,将其垂直固定(需自备固定装置);

② 置于室温下放置30分钟;

③ SEC纯化柱下方放置一个空烧杯;

④ 打开顶部柱塞和底盖,将管中保存液排空至底部出口无液体流出,向柱中加入15mL 1×PBS,可分次加,让液体全部流出,再上样。

3. 样品上样

① 8个EP管,依次标记为1,2,3,4,5,6,7,8;

② 1 mL样品从SEC纯化柱顶部沿壁加入,样品完全进入填料并且底部出口无液体流出后,加入0.5 mL 1×PBS,使用EP管1收集流出液,收集体积为0.5 mL;

③ 待上一个0.5 mL 1×PBS全部进入排阻柱内后,再添加0.5 mL的1×PBS,使用EP管2收集流出液,收集体积为0.5 mL;

注意:使用时应尽量保证柱内有液体,以确保填料能够被充分润湿。

④ 重复操作6次,总共收集8管洗脱液。

注意:1. 样品最小体积不应小于1 mL;样品不足1 mL时,用1×PBS补到1 mL,混匀后再上样。

4. 外泌体收集

① 若想获得高回收率外泌体:保留3,4,5,6,7的馏分,共计2.5 mL;若不区分馏分,在第2个0.5 mL 1×PBS全部进入排阻柱内后,直接加入2.5 ml 1×PBS,洗脱至一个收集管中。

② 若想获得高纯度外泌体:将第4,5,6的馏分合并,共计1.5 mL。

注意: 如需浓缩外泌体洗脱液,可使用100 kDa超滤管,4000 g离心浓缩到目的体积即可。

5. SEC纯化柱的清洗与储存

收集结束后,加10 mL清洗液,接着用1×PBS冲洗15 mL,再用1×保存液冲洗10 mL。将底盖关闭,用1×保存液填满SEC纯化柱,用柱塞封闭顶部端口并检查无液体流出后,4 ℃保存。

注意:1. 该SEC纯化柱可重复使用10次。

2. 使用结束后需要用封口膜将柱上端封死,避免保存液挥发。

 

注意事项

本品仅限于科学研究使用,不得用于临床诊断或治疗,不得用于食品或药品。